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[【经验与求助】] 细胞生长曲线的绘制

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发表于 2007-5-11 18:42:51 | 显示全部楼层 |阅读模式
.取对数生长期细胞,用胰酶消化收集,调整单细胞悬液密度为104~105个/mL视细胞贴壁后的大小,倍增时间等因素确定接种密度。按200μl/孔(1×104个细胞)接种于96孔培养板内,每组细胞接种5个孔,取平均值,切记各孔的接种密度一致。
2.置37℃、5%CO2气相和饱和湿度的CO2培养箱中培养,
3.用PBS配制5mg/ml的MTT溶液,0.22微膜过滤除菌,4度保存。(MTT溶剂需避光4度保存,配好的溶剂有效期两周,过期的不能再用于实验,须重配)
4.从第24 h开始,每隔24 h随机取1块96孔板,96孔板每孔加入20μl 5mg/mL MTT液,继续培养4 h后,吸出孔内培养液;向每孔加入150μl DMSO。将培养板置于微孔板振荡器上振荡10 min,使结晶物溶解。
5.酶联免疫检测仪检测各孔OD值,检测波长570 nm, 以时间为横坐标,平均OD值为纵坐标,记录并绘制细胞生长曲线。
备注:
A.选择适当的细胞接种浓度。因此,在进行MTT试验前,对每一种细胞都应测其贴壁率、倍增时间以及不同接种细胞数条件下的生长曲线,然后确定试验中每孔的接种细胞数和培养时间,以保证培养终止时不致细胞过满。这样,才能保证MTT结晶形成的量与细胞数呈良好的线性关系。
B.细胞生长曲线方法96孔板太小,接种细胞多时,用不了几天就长满,因一般要做5-7天);接种细胞少时,不易养活.
C.避免血清干扰。用含15%胎牛血清培养液培养细胞时,高浓度的血清物质会影响试验孔的吸光值。由于试验本底增加,会降低试验敏感性。因此,一般选小于10%胎牛血清的培养液进行试验。在呈色后,尽量吸净培养孔内残余培养液。
D.操作过程中按常规换液.一般2-3天换液,如果不换液,则酸性产物等代谢产物积聚,一方面培养环境改变影响细胞生长,另一方面细胞营养消耗过多,生长变慢.做细胞生长曲线的目的是反映其生长特性,增殖能力,不换液则与我们平时细胞生长环境不一致.结果不科学.
E.实验时应设置调零孔,对照孔,加药孔。调零孔加培养基、MTT、二甲基亚砜。 对照孔和加药孔都要加细胞、培养液、MTT、二甲基亚砜,不同的是对照加溶解药物的介质,而加药组加入不同浓度的药物。
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